Uji Potensi Desinfektan

BAB I

PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Tuhan menciptakan berbagai makhluk di muka bumi ini.Mulai dari makhluk yang lebih besar hingga makhluk yang lebih kecil atau biasa disebut dengan mikroorganisme. Semua ciptaan itu tidaklah sia – sia. Setiap makhluk pasti memiliki kelebihan dan kekurangan.

Pada saat ini, mikroorganisme sangat membahayakan bagi kelangsungan hidup manusia. Salah satunya adalah bakteri. Bakteri dapat berada dimana-mana. Oleh sebab itu, pada zaman yang maju ini telah diciptakan berbagai produk yang dapat membunuh mikroba – mikroba tersebut. Salah satu produknya adalah berupa desinfektan. Hal ini muncul karena mengingat, bahwa pentingnya kebersihan itu dalamhidup. Selain bersih, juga akan meningkatnya angka kesehatan dalam masyarakat.

Dewasa ini, telah banyak beredar berbagai merek desinfektan. Dan masing – masingnya dikeluarkan oleh perusahaan yang berbeda – beda pula. Mereka saling bersaing dan berusaha agar produknya disenangi oleh konsumen. Mereka mau mengerjakan apa saja demi mengejar keuntungan. Ada sebagian dari mereka yang jujur dan ada juga yang berbohong kepada konsumen. Namun, sebagi konsumen kita harus hati – hati dalam memilih produk , terutama produk desinfektan ini. Oleh sebab itu, kita perlu mempunyai bukti akan kebenaran sebuah produk dan perlu mengetahui potensi produk itu dalam melakukan kerjanya. Untuk itu, perlu bagi kita untuk mengetahuipotensi suatu desinfektan dalam membunuh suatu mikroorganisme, yang mana dalam hal ini, desinfektan yang diambil adalah So Klin Lantai. Di samping itu, Pengujian terhadap desinfektan ini juga merupakan kurikulum pembelajaran dari sekolah. Sehingga penelitian mengenai desinfektan ini sangat perlu dan memberikan pengetahuan mengenai metode difusi cakram.

1.2 Identifikasi Masalah

1.2.1. Kebersihan lantai yang terkontaminasi oleh bakteri.

1.2.2. Lantai merupakan tempat aktivitas.

1.2.3. Metode difusi cakram digunakan untuk membuktikan kemampuan dari desinfektan yang bermerek so klin lantai.

1.3 Pembatasan Masalah

Dari identifikasi masalah di atas, dalam penelitian akan dilakukan pembuatan konsentrasi desinfektan, di mana dalam hal ini desinfektannya adalah so klin lantai dan mikroba yang akan dibiakkan adalah mikroba yang ada di udara.

Adapun indicator yang akan dianalisis adalah :

1. Potensi So Klin Lantai dalam membunuh mikroba.

2. Potensi mikroba terhadap So Klin Lantai.

3. Bentuk dan luas daerah halo yang terbentuk.

1.4 Perumusan Masalah

Sesuai dengan masalah yang dikemukakan pada identifikasi masalah maka perumusan masalah dari penelitian ini adalah bagaimanakah potensi So Klin Lantai dalam membunuh mikroba. Dari perumusan masalah tersebut , yang menjadi pertanyaan dalam penelitian ini adalah :

1. Apakah So Klin Lantai dapat membunuh mikroba – mikroba di udara yang menempel di lantai ?

2. Pada konsentrasi berapakah So Klin Lantai dapat membunuh mikroba yang efektif ?

3. Pada konsentrasi berapakah So Klin Lantai dapat membunuh mikroba dengan kurang efektif ?

4. Berapakah besar daerah halo yang tidak ditumbuhi mikroba yang kurang efektif ?

5. Berapakah besar daerah halo yang tidak ditumbuhi mikroba yang efektif ?

6. Mampukah So Klin Lantai membunuh mikroba – mikroba tersebut ?

7. Bagaimana pengaruh So Klin Lantai terhadap mikroba udara tersebut ?

1.5 Tujuan penelitian

Berdasarkan latar belakang di atas, maka tujuan penelitian ini adalah :

1. Untuk mengetahui tentang metode difusi cakram.

2. Untuk mengetahui potensi So Klin Lantai dalam membunuh mikroorganisme.

3. Untuk mengetahui pada konsentrasi berapakah mikroorganisme terbunuh secara efektif.

4. Untuk mengetahui bagaimana pengaruh So Klin Lantai terhadap mikroorganisme.

5. Untuk mengetahui perbandingan kemampuan membunuh mikroba pada masing – masing konsentrasi.

6. Untuk mengetahui hubungan luas daerah halo dengan konsentrasi So Klin Lantai.

1.6 Manfaat penelitian

1. Untuk memenuhi tugas mikrobiologi.

2. Untuk memberikan informasi kepada pembaca tentang bagaimana cara hidup sehat dan memberikan informasi tentang desinfektan itu sendiri.

3. Untukmeningkatkan angka kesehatan di kalangan masyarakat.

4. Bagi peneliti sendiri dapat melakukan pengembangan ilmu pengetahuan yang berhubungan dengan desinfektan dan pengaruhnya terhadap mikroba.

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Landasan Teori

2.1.1 Desinfektan

Desinfektan didefinisikan sebagai bahan kimia atau pengaruh fisika yang digunakan untuk mencegah terjadinya infeksi atau pencemaran jasad renik seperti bakteri dan virus, juga untuk membunuh atau menurunkan jumlah mikroorganisme atau kuman penyakit lainnya. Sedangkan antiseptik didefinisikan sebagai bahan kimia yang dapat menghambat atau membunuh pertumbuhan jasad renik seperti bakteri, jamur dan lain-lain pada jaringan hidup. Bahan desinfektan dapat digunakan untuk proses desinfeksi tangan, lantai, ruangan, peralatan dan pakaian. Dalam pengertian lain, desinfektan adalah suatu bahan yang dapat membunuh atau menghambat pertumbuhan suatu mikroorganisme terutama mikroba atau bakteri pathogen atau membahayakan yang terdapat pada benda mati.

Dalam uji potensi desinfektan digunakan metode Difusi Cakram. Difusi adalah perpindahan zat (cair, gas atau zat-zat padat) dari larutan yang berkadar tinggi ke larutan berkadar rendah, sehingga kerapatan atau kadar larutan tersebut sam dimana-mana. Sedangkan cakram adalah sebuah bentuklingkaran yang mengelilingi sesuatu.

Pada dasarnya ada persamaan jenis bahan kimia yang digunakan sebagai antiseptik dan desinfektan. Tetapi tidak semua bahan desinfektan adalah bahan antiseptik karena adanya batasan dalam penggunaan antiseptik. Antiseptik tersebut harus memiliki sifat tidak merusak jaringan tubuh atau tidak bersifat keras. Terkadang penambahan bahan desinfektan juga dijadikan sebagai salah satu cara dalam proses sterilisasi, yaitu proses pembebasan kuman. Tetapi pada kenyataannya tidak semua bahan desinfektan dapat berfungsi sebagai bahan dalam proses sterilisasi.

Bahan kimia tertentu merupakan zat aktif dalam proses desinfeksi dan sangat menentukan efektivitas dan fungsi serta target mikroorganime yang akan dimatikan. Dalam proses desinfeksi sebenarnya dikenal dua cara, cara fisik (pemanasan) dan cara kimia (penambahan bahan kimia). Dalam tulisan ini hanya difokuskan kepada cara kimia, khususnya jenis-jenis bahan kimia yang digunakan serta aplikasinya.

Banyak bahan kimia yang dapat berfungsi sebagai desinfektan, tetapi umumnya dikelompokkan ke dalam golongan aldehid atau golongan pereduksi, yaitu bahan kimia yang mengandung gugus -COH; golongan alkohol, yaitu senyawa kimia yang mengandung gugus -OH; golongan halogen atau senyawa terhalogenasi, yaitu senyawa kimia golongan halogen atau yang mengandung gugus -X; golongan fenol dan fenol terhalogenasi, golongan garam amonium kuarterner, golongan pengoksidasi, dan golongan biguanida.

Telah dilakukan perbandingan koefisien fenol turunan aldehid (formalin dan glutaraldehid) dan halogen (iodium dan hipoklorit) terhadap mikroorganisme Staphylococcus aureus dan Salmonella typhi yang resisten terhadap ampisilin dengan tujuan untuk mengetahui keefektifan dari disinfektan turunan aldehid dan halogen yang dibandingkan dengan fenol dengan metode uji koefisien fenol . Fenol digunakan sebagai kontrol positif, aquadest sebagai kontrol negatif dan larutan aldehid dan halogen dalam pengenceran 1 : 100 sampai 1 : 500 dicampur dengan suspensi bakteri Staphylococcus aureus dan Salmonella typhi resisten ampisilin yang telah diinokulum, keburaman pada tabung pengenceran menandakan bakteri masih dapat tumbuh. Nilai koefisien fenol dihitung dengan cara membandingkan aktivitas suatu larutan fenol dengan pengenceran tertentu yang sedang diuji. Hasil dari uji koefisien fenol menunjukan bahwa disinfektan turunan aldehid dan halogen lebih efektif membunuh bakteri Staphylococcus aureus dengan nilai koefisien fenol 3,57 ; 5,71 ; 2,14 ; 2,14 berturut-turut untuk formalin, glutaraldehid, iodium dan hipoklorit, begitu juga dengan bakteri Salmonella typhi, disinfektan aldehid dan halogen masih lebih efektif dengan nilai koefisien fenol 1,81 ; 2,72 ; 2,27 dan 2,27 berturut-turut untuk formalin, glutaraldehid, iodium dan hipoklorit.

2.1.2 Desinfeksi dan Antiseptik

Desinfeksi adalah membunuh mikroorganisme penyebab penyakit dengan bahan kimia atau secara fisik, hal ini dapat mengurangi kemungkinan terjadi infeksi dengan jalam membunuh mikroorganisme patogen. Disinfektan yang tidak berbahaya bagi permukaan tubuh dapat digunakan dan bahan ini dinamakan antiseptik.

Antiseptik adalah zat yang dapat menghambat atau menghancurkan mikroorganisme pada jaringan hidup, sedang desinfeksi digunakan pada benda mati. Desinfektan dapat pula digunakan sebagai antiseptik atau sebaliknya tergantung dari toksisitasnya.

Sebelum dilakukan desinfeksi, penting untuk membersihkan alat-alat tersebut dari debris organik dan bahan-bahan berminyak karena dapat menghambat proses disinfeksi.

Macam-macam desinfektan yang digunakan:

1. Alkohol
   Etil alkohol atau propil alkohol pada air digunakan untuk mendesinfeksi kulit. Alkohol yang dicampur dengan aldehid digunakan dalam bidang kedokteran gigi unguk mendesinfeksi permukaan, namun ADA tidak menganjurkkan pemakaian alkohol untuk mendesinfeksi permukaan oleh karena cepat menguap tanpa meninggalkan efek sisa.
2. Aldehid
   Glutaraldehid merupakan salah satu desinfektan yang populer pada kedokteran gigi, baik tunggal maupun dalam bentuk kombinasi. Aldehid merupakan desinfektan yang kuat. Glutaraldehid 2% dapat dipakai untuk mendesinfeksi alat-alat yang tidak dapat disterilkan, diulas dengan kasa steril kemudian diulas kembali dengan kasa steril yang dibasahi dengan akuades, karena glutaraldehid yang tersisa pada instrumen dapat mengiritasi kulit/mukosa, operator harus memakai masker, kacamata pelindung dan sarung tangan heavy duty. Larutan glutaraldehid 2% efektif terhadap bakteri vegetatif seperti M. tuberculosis, fungi, dan virus akan mati dalam waktu 10-20 menit, sedang spora baru alan mati setelah 10 jam.
3. Biguanid
   Klorheksidin merupakan contoh dari biguanid yang digunakan secara luas dalam bidang kedokteran gigi sebagai antiseptik dan kontrok plak, misalnya 0,4% larutan pada detergen digunakan pada surgical scrub (Hibiscrub), 0,2% klorheksidin glukonat pada larutan air digunakan sebagai bahan antiplak (Corsodyl) dan pada konsentrasi lebih tinggi 2% digunakan sebagai desinfeksi geligi tiruan. Zat ini sangat aktif terhadap bakteri Gram(+) maupun Gram(-). Efektivitasnya pada rongga mulut terutama disebabkan oleh absorpsinya pada hidroksiapatit dan salivary mucus.
4. Senyawa halogen. Hipoklorit dan povidon-iodin adalah zat oksidasi dan melepaskan ion halide. Walaupun murah dan efektif, zat ini dapat menyebabkan karat pada logam dan cepat diinaktifkan oleh bahan organik (misalnya Chloros, Domestos, dan Betadine).
5. Fenol
   Larutan jernih, tidak mengiritasi kulit dan dapat digunakan untuk membersihkan alat yang terkontaminasi oleh karena tidak dapat dirusak oleh zat organik. Zat ini bersifat virusidal dan sporosidal yang lemah. Namun karena sebagian besar bakteri dapat dibunuh oleh zat ini, banyak digunakan di rumah sakit dan laboratorium.
6. Klorsilenol
   Klorsilenol merupakan larutan yang tidak mengiritasi dan banyak digunakan sebagai antiseptik, aktifitasnya rendah terhadap banyak bakteri dan penggunaannya terbatas sebagai desinfektan (misalnya Dettol).

Desinfeksi permukaan

Disinfektan dapat membunuh mikroorganisme patogen pada benda mati. Disinfektan dibedakan menurut kemampuannya membunuh beberapa kelompok mikroorganisme, disinfektan “tingkat tinggi” dapat membunuh virus seperti virus influenza dan herpes, tetapi tidak dapat membunuh virus polio, hepatitis B atau M. tuberculosis.

Untuk mendesinfeksi permukaan dapat dipakai salah satu dari tiga desinfektan seperti iodophor, derivate fenol atau sodium hipokrit :

• Iodophor dilarutkan menurut petunjuk pabrik. Zat ini harus dilarutkan baru setiap hari dengan akuades. Dalam bentuk larutan, desinfektan ini tetap efektif namun kurang efektif bagi kain atau bahan plastik.
• Derivat fenol (O-fenil fenol 9% dan O-bensil-P klorofenol 1%) dilarutkan dengan perbandingan 1 : 32 dan larutan tersebut tetap stabil untuk waktu 60 hari. Keuntungannya adalah “efek tinggal” dan kurang menyebabkan perubahan warna pada instrumen atau permukaan keras.
• Sodium hipoklorit (bahan pemutih pakaian) yang dilarutkan dengan perbandingan 1 : 10 hingga 1 : 100, harganya murah dan sangat efektif. Harus hati-hati untuk beberapa jenis logam karena bersifat korosif, terutama untuk aluminium. Kekurangannya yaitu menyebabkan pemutihan pada pakaian dan menyebabkan baru ruangan seperti kolam renang.

Untuk mendesinfeksi permukaan, umumnya dapat dipakai satu dari tiga desinfektan diatas. Tiap desinfektan tersebut memiliki efektifitas “tingkat menengah” bila permukaan tersebut dibiarkan basah untuk waktu 10 menit.

Setidaknya ada 10 kriteria suatu desinfektan dikatakan ideal, yaitu :

- Bekerja dengan cepat untuk menginaktivasi mikroorganisme pada suhu kamar

- Aktivitasnya tidak dipengaruhi oleh bahan organik, pH, temperatur dan kelembaban

- Tidak toksik pada hewan dan manusia

- Tidak bersifat korosif

- Tidak berwarna dan meninggalkan noda

- Tidak berbau/ baunya disenangi

- Bersifat biodegradable/ mudah diurai

- Larutan stabil

- Mudah digunakan dan ekonomis

- Aktivitas berspektrum luas

Untuk itu, setidaknya ada tiga langkah yang harus dipenuhi dalam pelaksanaan desinfeksi bila ingin hasilnya baik. Pertama, harus dibasuh dengan air, dengan tujuan untuk melarutkan matriks protein. Pada tahap ini, kotoran di permukaan harus dihilangkan dengan cara digosok maupun disapu dan disemprot dengan air.Penggunaan air panas akan lebih efektif dibandingkan dengan air dingin. Kemudian yang kedua, diberi sabun atau deterjen, dengan tujuan untuk melarutkan matriks lemak. Yang terakhir, barulah dipakai desinfeksi.

Berbagai macam desinfektan yang umum digunakan untuk mencuci hamakan kandang dan peralatan. Masing-masing desinfektan tersebut memiliki daya dan sifat yang perlu kita pelajari.

1. Coustic Soda (NaOH)-soda api. Coustic Soda (NaOH) 2% dapat digunakan untuk pengendalian penyebaran penyakit, yang diakibatkan oleh mikroorganisme, misalnya bakteri, virus dan parasit. Bahan ini sangat baik digunakan untuk pembasmi virus, akan tetapi dalam penggunaanya harus hati-hati, karena bahan ini bersifat keras. Para pemakai harus menggunkan sarung tangan dari karet, karena dalam konsentrasi tertentu dapat mengiritasi kulit. Oleh karena itu, akan sangat berbahaya jika terkena wajah dan mata. kandang yang habis di desinfeksi dengan soda api, harus dibiarkan kosong dulu sampai kondisi kandang misalnya lantai dan dinding menjadi kering. atau bilamana perlu, setelah desinfektan kontak dengan lantai dan dinding, selama +- 8 jam, dapat segera dibilas dengan air bersih. larutan soda api ini sangat efektif untuk membunuh virus IB dan ND.
2. Lysol. Merupakan desinfektan yang digunakan untuk mendesifeksi kandang dan peralatan sesudah depopulasi (pengosongan kandang) yang dilakukan setelah ayam di afkir atau terkena wabah. Dibandingkan dengan phenol, lysol memiliki kemampuan sebagai pembasmi bakteri yang lebih baik dan tidak beracun. Dapasaran lysol banyak dijual dengan konsentrasi 100% walau dalampemakaianya cukup 2 % saja, sehingga bila kan digunakan harus diencerkan terlebih dahulu.
3. Phenol 2%. merupakan turunan (derivat) dari phenolkresol. Pada umumnya, derivat ini sangat tahan terhadap hambatan dari sisa-siasa organis. Phenol sangat cocok untuk mendesinfeksi kandang dan bak tempat mencuci alas kaki.
4. Jodophor ( halogen). Merupakan kelompok desinfektan yang biasa disebut dengan nama halogen. Bahan ini merupakan sintetis dari yodium(halogen) dan zat organis. Desinfektan ini sangat efektif bagi semua kuman, cendawan, virus, serta dapat digunakan dalam berbagai keperluan. Jodophor selain sebagai berfungsi sebagai desinfektan juga berfungsi sebagai snitaizer dan antiseptika.
5. Formalin 40% (Formaldehyda). Formalin sebagai bahan desinfeksi dapat di gunkan dalam berbagai keperluan, antara lain sebgai berikut.

1. Untuk Mendesinfeksi lantai dan dinding kandang, digunakan larutan formalin dalam air 4%.
2. Untuk mendesinfeksi alas kaki, digunakan larutan formalin dalam air 0,5%-1%.
3. Sebagai bahan atau unsur Fumigasi. Pada kesempatan lain akan saya tuliskan cara penggunaan formalin ini untuk fumigasi.

2.2 Kerangka Pemikiran

Kertas bulat direndam selama 30 menit. Kemudian diletakkan ke dalam media yang telah disediakan. Kertas bulat tersebut menyerap larutan So Klin Lantai selama 30 menit. Sehingga kekuatan desinfektannya sesuai dengan konsentrasi yang telah ditentukan dan dapat membunuh bakteri yang ada di sekitarnya.

Berdasarkan hal tersebut, So Klin Lantai menempel pada kertas bulat dan dapat membunuh mikroba yang ada di sekitarnya.

2.3 Hipotesis Penelitian

Bahwa terjadinya perbedaan kemampuan So Klin Lantai dalam berbagai konsentrasi. Semakin tinggi konsentrasi larutan So Klin Lantai, maka semakin besar daerah halo yang terbentuk.

BAB III

METODOLOGI

3.1 Jenis Penelitian

Penelitian ini merupakan penelitian eksperimen skala laboratorium yang menguji potensi So Klin Lantai dalam membunuh mikroorganisme.

3.2 Tempat dan Waktu Penelitian

Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Mikrobiologi Sekolah Menengah Analis Kimia Padang, pada tanggal 29 Juli sampai 30 Juli 2009. Tepatnya pada pukul 09.45.

3.3 Populasi dan Sampel

3.3.1. Populasi

Populasi dari penelitian ini adalah mikroorganisme yang diambil dari udara.

3.3.2. Sampel

Sampel yang dianalisis adalah desinfektan yang bermerek So Klin Lantai.

3.4 Instrument Penelitian

a. Alat

1. Cawan Petri

2. Erlenmeyer 250 mL

3. Gelas Piala 250 mL

4. Kuvet

5. Inkubator

6. Lampu Spritus

7. Pinset

8. Pipet Takar 1 mL

b. Bahan

1. Media NA

2. Aquades steril

3. Larutan Desinfektan “So Klin Lantai”

4. Suspensi bakteri udara

5. Alkohol 70 %

6. Kapas penutup

7. Kertas pembungkus cawan

8. Kertas koran

3.5 Eksperimental

3.5.1 Pembuatan Larutan So Klin Lantai dengan konsentrasi 10 %

1. Pastikan semua peralatan telah bersih dan kering serta steril.

2. Dipipet 1 mL larutan So Klin Lantai dengan pipet takar 10 mL. Kemudian masukkan ke dalam gelas piala 250 mL yang telah berisi kertas cakram (berbentuk bulat).

3. Lalu, dipipet larutan pengencer (aquades steril) sebanyak 9 mL. Dan masukkan ke dalam gelas piala yang berisi sample.

4. Kemudian, homogenkan larutan dengan cara menggoyangkannya perlahan – lahan.

3.5.2 Pembuatan larutan So Klin Lantai dengan konsentrasi 15 %

1. Pastikan semua peralatan telah bersih, kering, dan steril.

2. Dipipet 1,5 mL larutan So Klin Lantai dengan pipet takar 10 mL. Masukkan ke dalam gelas piala yang telah berisi kertas cakram.

3. Dipipet 8,5 mL larutan pengencer (aquades steril) dan dimasukkan ke

dalam gelas piala yang berisi sample.

4. Kemudian,homogenkan larutan dengan cara menggoyangkannya perlahan – lahan.

3.5.3. Pembuatan Larutan So Klin Lantai dengan konsentrasi 20 %

1. Pastikan semua peralatan telah bersih, kering, dan steril.

2. Dipipet 2 mL larutan So Klin Lantai dengan pipet takar 10 ml. Dan masukkan ke dalam gelas piala yang telah berisi kertas cakram.

3. Dipipet 8 mL larutan pengencer (aquades steril) dan masukkan ke dalam gelas piala yang berisi sample.

4. Kemudian, homogenkan larutan dengan menggoyangkannya perlahan – lahan.

3.5.4. Pembuatan larutan So Klin Lantai dengan konsentrasi 25 %

1. Pastikan peralatan telah bersih, kering, dan steril.

2. Dipipet 2,5 mL larutan So Klin Lantai dengan pipet takar 10 mL. Dan masukkan ke dalam gelas piala yang telah berisi kertas cakram.

3. Dipipet 7,5 mL larutan pengencer (aquades steril) dan masukkan ke dalam gelas piala yang berisi sample.

4. Kemudian, homogenkan larutan dengan menggoyangkannya perlahan – lahan.

3.5.5. Pengujian Potensi So Klin Lantai dalam Membunuh Mikroba

1. Pastikan semua peralatan telah bersih, kering, dan steril.

2. Dibuat suatu biakan murni. Kemudian ditambahkkan 5 mL aquades ke dalamnya. Dan homogenkan.

3. Dipipet 1 mL dari biakan yang berisi aquades dan dimasukkan ke dalam cawan Petri steril. Lalu tuangkan media NA ke dalam cawan dan homogenkan.

4. Dipotong 2 buah kertas (sesuai kebutuhan) dengan bentuk lingkaran (sebagai cakram) dan direndam ke dalam larutan desinfektan (So Klin Lantai) yang telah diencerkan sesuai dengan konsentrasinya selam 30 menit.

5. Setelah itu, letakkan kertas cakram yang sudah direndam tadi ke dalam cawan Petri yang telah berisi media agar dan suspensi bakteri.

6. Lalu, masukkan ke dalam incubator dan amati selama 2 x 24 jam.

3.6 Analisis Data

1. Konsentrasi 10 %

a. Cawan 1

Diameter cakram = 2,5 cm r = 1,25 cm

Diameter daerah halo = 5 cm r = 2,5 cm

Maka, luas cakram dan luas daerah halo adalah :

Luas cakram = 3,14 x 1,25 cm x 1,25 cm = 4,90625 cm²

Luas daerah halo = 3,14 x 2,5 cm x 2,5 cm = 19,625 cm²

Luas daerah halo sebenarnya = 19,625 cm²– 4,90625 cm²

= 14,71875 cm²

b. Cawan 2

Diameter cakram = 2,5 cm r = 1,25 cm

Diameter daerah halo = 5 cm r = 2,5 cm

Maka, luas cakram dan luas daerah halo adalah :

Luas cakram = 3,14 x 1,25 cm x 1,25 cm = 4,90625 cm²

Luas daerah halo = 3,14 x 2,5 cm x 2,5 cm = 19,625 cm²

Luas daerah halo sebenarnya = 19,625 cm²– 4,90625 cm²

= 14,71875 cm²

Rata – rata Luas daerah halo = 14,72 cm² + 14,72 cm² / 2

= 29,44 cm² / 2

= 14,72 cm²

2. Konsentrasi 15 %

a. Cawan 1

Diameter cakram = 2,5 cm r = 1,25 cm

Diameter daerah halo = 6 cm r = 3 cm

Maka, luas cakram dan luas daerah halo adalah :

Luas cakram = 3,14 x 1,25 cm x 1,25 cm = 4,90625 cm²

Luas daerah halo = 3,14 x 3 cm x 3 cm = 28,26 cm²

Luas daerah halo sebenarnya = 28,26 cm² – 4,90625 cm²

= 23,35375 cm²

b. Cawan 2

Diameter cakram = 2,5 cm r = 1,25 cm

Diameter daerah halo = 5,5 cm r = 2,75 cm

Maka, luas cakram dan luas daerah halo adalah :

Luas cakram = 3,14 x 1,25 cm x 1,25 cm = 4,90625 cm²

Luas daerah halo = 3,14 x 2,75 cm x 2,75 cm = 23,74625 cm²

Luas daerah halo sebenarnya = 23,74625 cm² – 4,90625 cm²

= 18,84 cm²

Rata – rata Luas daerah halo = 23,35 cm² +18,84 cm² / 2

= 42,19 cm² / 2

= 21,095 cm²

3. Konsentrasi 20 %

a. Cawan 1

Diameter cakram = 2,4 cm r = 1,2 cm

Diameter daerah halo = 6 cm r = 3 cm

Maka, luas cakram dan luas daerah halo adalah :

Luas cakram = 3,14 x 1,2 cm x 1,2 cm = 4,5216 cm²

Luas daerah halo = 3,14 x 3 cm x 3 cm = 28,26 cm²

Luas daerah halo sebenarnya = 28,26 cm² – 4,5216 cm²

= 23,7348 cm²

b. Cawan 2

Diameter cakram = 2,4 cm r = 1,2 cm

Diameter daerah halo = 4,5 cm r = 2,25 cm

Maka, luas cakram dan luas daerah halo adalah :

Luas cakram = 3,14 x 1,2 cm x 1,2 cm = 4,5216 cm²

Luas daerah halo = 3,14 x 2,25 cm x 2,25 cm = 15,89625 cm²

Luas daerah halo sebenarnya = 15,89625 cm² – 4,5216 cm²

= 11,37465 cm²

Rata – rata Luas daerah halo = 23,7348 cm² + 11,37465 cm² / 2

= 35,10945 / 2

= 17,55 cm²

4. Konsentrasi 25 %

a. Cawan 1

Diameter cakram = 2,5 cm r = 1,25 cm

Diameter daerah halo = 6,5 cm r = 3,25 cm

Maka, luas cakram dan luas daerah halo adalah :

Luas cakram = 3,14 x 1,25 cm x 1,25 cm = 4,90625 cm²

Luas daerah halo = 3,14 x 3,25 cm x 3,25 cm = 33,16625 cm²

Luas daerah halo sebenarnya = 33,16625 cm² – 4,90625 cm²

= 28,26 cm²

b. Cawan 2

Diameter cakram = 2,5 cm r = 1,25 cm

Diameter daerah halo = 6 cm r = 3 cm

Maka, luas cakram dan luas daerah halo adalah :

Luas cakram = 3,14 x 1,25 cm x 1,25 cm = 4,90625 cm²

Luas daerah halo = 3,14 x 3 cm x 3 cm = 28,26 cm²

Luas daerah halo sebenarnya = 28,26 cm² – 4,90625 cm²

= 23,35375 cm²

Rata – rata Luas daerah halo = 28,26 cm² + 23,35375 cm² /2

=51,61375 cm² / 2

= 25,80 cm²

BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

No	Konsentrasi	Luas Daerah halo (cm2)		Rata – rata Luas Daerah Halo (cm2)
		Cawan 1	Cawan 2
1	10 %	14,71875	14,71875	14,72
2	15 %	23,35375	18,84	21,095
3	20 %	23,7348	11,37465	17,55
4	25 %	28,26	23,35375	25,80

Dari analisis data di atas, dilihat bahwa semakin tinggi konsentrasi larutan So Klin Lantai, maka semakin besar daerah halo yang terbentuk. Hal ini membuktikan bahwa bakteri udara tersebut rentan (tidak tahan) terhadap desinfektan yang bermerek So Klin Lantai. Artinya, So Klin lantai memiliki potensi yang tinggi dalam membunuh mikroorganisme.

Namun, berdasarkan data analisis di atas, terjadi penurunan luas daerah halo pada konsentrasi 20 %. Sedangkan selebihnya semakin meningkat jika konsentrasinya meningkat. Mungkin kesalahan – kesalahan ini diakibatkan oleh kurangnya ketelitian dari pekerja. Karena yang bekerja tidak hanya satu orang saja. Ada 4 kelompok yang melakukan pekerjaan itu dengan cara yang sama. Namun, Mungkin saja ada prosedur yang salah, sehingga hasilnya juga kurang memuaskan. Tetapi, pada prinsipnya kita tahu bahwa semakin tinggi konsentrasi larutan desinfektan So Klin Lantai, maka semakin besar daerah halo yang terbentuk.

BAB V

KESIMPULAN DAN SARAN

5.1 Kesimpulan

Berdasarkan hasil analisis yang telah dilakukan, maka dapat ditarik kesimpulan bahwa bakteri udara rentan terhadap So Klin Lantai. Hal ini membuktikan bahwa So Klin Lantai mampu membunuh mikroorganisme secara efektif.

5.2 Saran

Untuk itu, penulis menyarankan kepada masyarakat untuk selalu menggunakan desinfektan terutama yang bermerek So Klin Lantai, agar tingkat kesehatan selalu terjaga. Karena dengan konsentrasi yang sedikit, So Klin Lantai sudah mampu membunuh bakteri.

DAFTAR PUSTAKA

Cifferi, O.1999. Microbial Degradation of Paintings. Aplied and environmental Microbiology 65 (3) : 879 – 885

Dawes, I. W dan I.W. Sutherland.1992. Microbial Physiology. 2^nd ed. Blackwell Scientific Publications, PP 289

Gabriel, J.F., 1988, Fisika Kedokteran, EGC; Jakarta, hal

Gadd, G. M. 1992. Microbial Control Of Heavy Metal Pollution. Dalam : Fry, J.C., G.M. Gadd, R. A. Herbert, C. W. Jones dan I. A. Watson. Craik (eds). Microbial Control of Pollution. Soecity For General Microbiology Symposium 48. Cambridge University Press. New York, PP 59 – 83

Keeton, T. William, Michael W. Debney, Robert E. Zollinhofer, 1968. Laboratory Guide For Biological Science. W. W. Norton and Company. Inc. New York

Reed, G. (ed.). 1982. Presscott & Dunn’s Industrial Microbiology. 4^th ed. AVI Publishing Company, Inc. Westport, Connesticut, PP 883

Suharto, Ign., 1995, Bioteknologi dalam Dunia Industri, Andi Offset;Yogyakarta, hal. 11, 194-195.

http://www.wikipedia/wiki-desinfektan.org

GAMBAR KERJA

Analisis Serat Kasar

ANALISIS SERAT KASAR

TUJUAN :

1. Untuk mengetahui pengertian dari serat kasar dan serat makanan.

2. Untuk mengetahui manfaat dari serat kasar.

3. Untuk mengetahui bagaimana cara mencari kadar serat kasar dalam makanan.

PRINSIP :

Sampel yang dihidrolisis dengan asam kuat dan basa kuat encer. Sehingga karbohidrat, protein, dan zat – zat lain terhidrolisis dan larut, kemudian disaring dan dicuci dengan air panas yang mengandung asam dan alcohol, selnajutnya dikeringkan dan ditimbang sampai bobot konstan.

TEORI DASAR :

Serat adalah zat non gizi, ada dua jenis serat yaitu serat makanan (dietry fiber) dan serat kasar (crude fiber). Peran utama dari serat dalam makanan adalah pada kemampuannya mengikat air, selulosa dan pektin. Dengan adanya serat, membantu mempercepat sisa-sisa makanan melalui saluran pencernaan untuk disekresikan keluar. Tanpa bantuan serat, feses dengan kandungan air rendah akan lebih lama tinggal dalam saluran usus dan mengalami kesukaran melalui usus untuk dapat diekskresikan keluar karena gerakan-gerakan peristaltik usus besar menjadi lebih lamban.

Istilah dari serat makanan (dietary fiber) harus dibedakan dengan istilah serat kasar (crude fiber) yang biasa digunakan dalam analisa proksimat bahan pangan. Serat kasar adalah bagian dari pangan yang tidak dapat dihidrolisis oleh asam atau basa kuat, bahan-bahan kimia yang digunakan untuk menentukan kadar serat kasar yaitu asam sulfat (H2SO4 1,25%) dan natrium hidroksida (NaOH 3,25%). Serat kasar adalah serat tumbuhan yang tidak larut dalam air.

Metode uji kualitatif yang biasa dipakai untuk menguji serat kasar adalah dengan pereaksi Schweltzar (kupra – ammonium – hidroksida), karena selulosa adalah suatu zat yang berwarna putih dan tidak larut dalam hampir semua pelarut. Pada analisa penentuan serat kasar diperhitungkan banyaknya zat – zat yang tidak larut dalam asam encer atau basa encer dengan kodisi tertentu.

Langkah – langkah yang dilakukan dalam analisa adalah :

§ Deffating, yaitu menghilangkan lemak yang terkandung dalam sample menggunakan pelarut lemak.

§ Digestion, terdiri dari dua tahapan yaitu pelarutan dengan asam dan pelarutan dengan basa. Kedua macam proses digesti ini dilakukan dalam keadaan tertutup pada suhu terkontrol (mendidih) dan sedapat mungkin dihilangkan dari pengaruh luar. Penyaringan harus segera dilakukan setelah digestion selesai, karena penundaan penyaringan dapat mengakibatkan lebih rendahnya hasil analisa karena terjadi perusakan serat lebih lanjut oleh bahan kimia yang dipakai untuk bahan yang mengandung banyak protein sering mengalami kesulitan dalam penyaringan, maka sebaiknya dilakukan digesti pendahuluan dengan menggunakan enzim.

Serat kasar sangat penting dalam penilaian kualitas bahan makanan karena angka ini merupakan indeks dan menentukan nilai gizi makanan tersebut. Selain itu, kandungan serat kasar dapat digunakan untuk mengevaluasi suatu proses pengolahan, misalnya proses penggilingan atau proses pemisahan antara kulit dan kotiledon, dengan demikian persentase serat dapat dipakai untuk menentukan kemurniaan bahan atau efisiensi suatu proses.

Sedangkan serat makanan adalah bagian dari bahan yang tidak dapat dihidrolisis oleh enzim-enzim pencernaan. Serat makanan adalah serat yang tetap ada dalam kolon atau usus besar setelah proses pencernaan, baik yang berbentuk serat yang larut dalam air maupun yang tidak larut dalam air.

Mutu serat dapat dilihat dari komposisi komponen serat makanan, dimana komponen serat makanan terdiri dari komponen yang larut (Solube Dietary Fiber, SDF), dan komponen yang tidak larut (Insoluble Dietary Fiber, IDF). Serat yang tidak larut dalam air ada 3 macam, yaitu selulosa, hemiselulosa dan lignin. Serat tersebut banyak terdapat pada sayuran, buah-buahan dan kacang-kacangan. Sedangkan serat yang larut dalam air adalah pectin, musilase, dan gum. Serat ini juga banyak terdapat pada buah-buahan, sayuran, dan sereal. Sedangkan gum banyak terdapat pada akasia.

Ada beberapa metode analisis serat, antara lain metode crude fiber, metode deterjen, metode enzimatis yang masing-masing mempunyai keuntungan dan kekurangan. Data serat kasar yang ditentukan secara kimia tidak menunjukan sifat serat secara fisiologis, rentang kesalahan apabila menggunakan nilai serat kasar sebagai total serat makanan adalah antara 10 - 500%, kesalahan terbesar terjadi pada analisis serealia dan terkecil pada kotiledon tanaman.

Metode analisis dengan menggunakan deterjen (Acid Deterjen Fiber, ADF atau Neutral Deterjen Fiber, NDF) merupakan metode gravimetri yang hanya dapat mengukur komponen serat makanan yang tidak larut. Adapun untuk mengukur komponen serat yang larut seperti pektin dan gum, harus menggunakan metode yang lain, selama analisis tersebut komponen serat larut mengalami kehilangan akibat rusak oleh adanya penggunaan asam sulfat pekat.

Metode enzimatik yang dikembangkan oleh Asp, et al (1984) merupakan metode fraksinasi enzimatik, yaitu penggunaan enzim amilase, yang diikuti oleh penggunaan enzim pepsin pankreatik. Metode ini dapat mengukur kadar serat makanan total, serat makanan larut dan serat makanan tidak larut secara terpisah. Ternyata dari hasil penyelidikan memperlihatkan bahwa serat sangat baik untuk kesehatan ,yaitu membantu mencegah sembelit, mencegah kanker , mencegah sakit pada usus besar, membantu menurunkan kadar kolesterol, membantu mengontrol kadar gula dalam darah, mencegah wasir , membantu menurunkan berat badan dan masih banyak lagi. Serat makanan tidak dapat diserap dalam usus halus dan tidak dapat masuk dalam sirkulasi darah, serat ini akan dibawa oleh usus halus masuk kedalam usus besar dengan gerakan peristaltik usus. Kehadiran serat pada usus besar ini baik untuk membantu proses - proses yang terjadi di usus besar. Rata-rata negara didunia ini menetapkan sebanyak 30 gr kebutuhan akan serat setiap harinya.

Serat makanan didefinisikan sebagai sisa-sisa skeletal sel-sel tanaman yang tahan terhadap hidrolisa oleh enzim-enzim pencernaan manusia. Serat makanan sering juga disebut sebagai ”unavailable carbohydrate” sedangkan yang tergolong sebagai ”available carbohydrate” adalah gula, pati dan dekstrin, karena zat-zat tersebut dapat dihidrolisa dan diabsorpsi manusia, yang kemudian di dalam tubuh diubah menjadi glukosa dan akhirnya menjadi energi atau disimpan dalam bentuk lemak. Serat makanan ini terdiri dari dinding sel tanaman yang sebagian besar mengandung 3 macam polisakarida yaitu sellulosa, zat pektin dan hemisellulosa. Selain itu juga mengandung zat yang bukan karbohidrat yakni lignin (Piliang dan Djojosoebagio, 2002).

Serat makanan tidak sama pengertiannya dengan serat kasar (crude fiber). Serat kasar adalah senyawa yang biasa dianalisa di laboratorium, yaitu senyawa yang tidak dapat dihidrolisa oleh asam atau alkali. Di dalam buku Daftar Komposisi Bahan Makanan, yang dicantumkan adalah kadar serat kasar bukan kadar serat makanan. Tetapi kadar serat kasar dalam suatu makanan dapat dijadikan indeks kadar serat makanan, karena umumnya didalam serat kasar ditemukan sebanyak 0,2 - 0,5 bagian jumlah serat makanan.

Serat makanan hanya terdapat dalam bahan pangan nabati, dan kadarnya bervariasi menurut jenis bahan. Kadar serat dalam makanan dapat mengalami perubahan akibat pengolahan yang dilakukan terhadap bahan asalnya. Sebagai contoh, padi yang digiling menjadi beras putih mempunyai kadar serat yang lebih rendah daripada padi yang ditumbuk secara tradisionil. Oleh karena itu beberapa waktu yang lalu muncul dedak padi di pasaran yang dikatakan sebagai obat berbagai macam penyakit.

Serat yang berasal dari makanan sesampainya di saluran pencernaan akan mengikat asam empedu yang sampai ke sana. Sebelum menjalankan tugasnya membantu penyerapan lemak, asam empedu sudah terikat oleh serat yang kemudian bersama serat dikeluarkan dari tubuh dalam bentuk kotoran. Untuk menggantikan asam empedu yang hilang tersebut, kolesterol dalam tubuh akan dirombak, sehingga makin banyak serat makin banyak asam empedu yang dibuang, berarti makin banyak kolesterol yang dikeluarkan dari tubuh, dengan demikian kadar kolesterol dalam tubuh akan menurun. Lemak dan sterol - sterol lain juga akan lebih banyak dikeluarkan dari tubuh. Sehingga serat – serat tersebut dapat mencegah terjadinya penyerapan kembali asam empedu, kolesterol dan lemak.

Serat dapat berperanan menghalangi penyerapan zat-zat gizi lain seperti lemak, karbohidrat dan protein. Sehingga apabila makanan mengandung kadar serat yang rendah maka hampir semua zat-zat gizi tersebut dapat diserap oleh tubuh. Di samping itu serat makanan dapat mempercepat rasa kenyang. Hal ini disebabkan karena orang akan mengunyah lebih lama bila dalam makanan terkandung kadar serat yang tinggi, sehingga sekresi saliva dan cairan gastrik akan lebih banyak dikeluarkan, yang kemudian kelebihannya akan masuk ke dalam lambung.

MANFAAT SERAT MAKANAN BAGI KESEHATAN KITA

Piliang dan Djojosoebagio (2002), mengemukakan bahwa yang dimaksudkan dengan serat kasar ialah sisa bahan makanan yang telah mengalami proses pemanasan dengan asam kuat dan basa kuat selama 30 menit yang dilakukan di laboratorium. Dengan proses seperti ini dapat merusak beberapa macam serat yang tidak dapat dicerna oleh manusia dan tidak dapat diketahui komposisi kimia tiap-tiap bahan yang membentuk dinding sel. Oleh karena itu serat kasar merendahkan perkiraan jumlah kandungan serat sebesar 80% untuk hemisellulosa, 50-90% untuk lignin dan 20-50% untuk sellulosa.

Definisi terbaru tentang serat makanan yang dismpaikan oleh the American Association of Cereal Chemist (AACC, 2001) adalah merupakan bagian yang dapat dimakan dari tanaman atau karbohidrat analog yang resisten terhadap pencernaan dan absorpsi pada usus halus dengan fermentasi lengkap atau partial pada usus besar. Serat makanan tersebut meliputi pati, polisakharida, oligosakharida, lignin dan bagian tanaman laainnya.

Beberapa karbohidrat tidak dapat dihidrolisa oleh enzim-enzim pencernaan pada manusia. Sisa yang tidak dicerna ini dikenal dengan diet serat kasar yang kemudian melewati saluran pencernaan dan dibuang dalam feses.

ALAT DAN BAHAN :

ALAT : BAHAN :

1. Neraca analitik digital 1. H₂SO₄ 1,25 %
2. Spatula 2. NaOH 3,25 %
3. Erlenmeyer 250 mL 3. Etanol 96 %
4. Desikator 4. Aquades
5. Pendingin tegak
6. Hot plate
7. Corong
8. Kertas saring
9. Bola hisap
10. Beaker glass 1000 mL
11. Batang pengaduk
12. Oven
13. Cawan Penguap
14. Pipet takar 10 mL
15. Neraca kasar
16. Botol semprot
17. Kompor gas
18. Penangas air
19. Standar
20. Klem
21. Neraca analitik
22. Gelas Piala 250 mL

CARA KERJA :

a. Membuat H₂SO₄ 1,25 %

1. Disiapkan semua peralatan dan pastikan telah bersih dan kering.

2. Dipipet 64,64 mL H₂SO₄ dengan pipet takar.

3. Dimasukkan ke dalam gelas piala 1000 mL yang telah berisi air sepertiganya.

4. Diencerkan dengan aquades hingga volume 3500 mL dan kemudian dihomogenkan.

5. Dan dimasukkan ke dalam botol / packing yang telah disediakan, beri label dan disimpan.

b. Membuat NaOH 3,25 %

1. Pastikan semua peralatan telah bersih dan kering.

2. Ditimbang 81,25 gram NaOH dengan neraca kasar.

3. Dilarutkan dengan aquades secara perlahan – lahan hingga semuanya larut.

4. Dimasukkan ke dalam gelas piala 1000 mL.

5. Ditambahkan aquades hingga volume 2500 mL dan dihomogenkan.

6. Kemudian dimasukkan ke dalam botol / packing yang telah disediakan dan beri label, lalu disimpan.

c. Mengetahui Kadar Serat Kasar

1. Ditimbang sample sebanyak 2 – 4 gram secara teliti dengan neraca analitik digital.
2. Pindahkan sample ke dalam gelas piala 250 mL.
3. Untuk pembebasan lemak, tambahkan etanol 96 % sebanyak 15 mL, lalu aduk dan kemudian diamkan beberapa menit.
4. Enaptuangkan larutan tersebut dengan kertas saring ke dalam Erlenmeyer 250 mL.
5. Lakukan proses enaptuang dua kali dengan etanol 96 % tersebut, dimana untuk ketiga kalinya endapan disertakan dalam penyaringan. Atau dapat juga pembebasan lemak sisa dari ekstraksi lemak dengan cara soklet atau cara mengaduk, mengenaptuangkan sampel dalam pelarut organik.
6. Lalu, angkat kertas saring yang telah berisi padatan dan keringkan.
7. Tambahkan ± 50 mL larutan H₂SO₄ 1,25 % ke dalam erlenmeyer dan diaduk.
8. Pasang pendingin tegak pada mulut Erlenmeyer.
9. Panaskan larutan refluk selama 30 menit dengan penangas air.
10. Jika telah selesai, langsung tambahkan ± 50 mL larutan NaOH 3,25 % .
11. Lakukan pemanasan larutan refluk kembali selama 30 menit.
12. Jika telah selesai, saring larutan dalam keadaan panas dengan kertas saring yang telah ditimbang konstan sebelumnya dengan menggunakan corong.
13. Lakukan pencucian dengan H₂SO₄ 1,25 % panas, air panas, dan terakhir dengan etanol 96 % (masing – masing 25 mL).
14. Diangkat endapan dan kertas saring, kemudian pindahkan ke cawan penguap yang telah dikonstankan beratnya terlebih dahulu dan mengeringkannya pada suhu 105⁰C di dalam oven, kemudian mendinginkannya dan menimbangnya sampai bobot tetap.

Untuk mencari kadar serat kasar, dapat digunakan rumus berikut :

Kadar serat kasar =

PERHITUNGAN :

a. Banyak Etanol yang Dibutuhkan

Etanol 96 % telah tersedia di laboratorium sekolah dengan konsentrasi yang sama. Berdasarkan praktikum yang akan dilakukan, etanol yang dibutuhkan sebanyak 15 mL, maka banyak etanol untuk 15 kelompok dan digunakan untuk 3 kali pengerjaan adalah :

Etanol 96 % (Untuk pembebasan lemak) = 3 x 15 mL x 15 kelompok = 675 mL

Etanol 96 % (Untuk proses enaptuang sebanyak 2 kali) = 2 x 15 mL x 3 x 15 kelompok

= 30 mL x 3 x 15 kelompok

= 1350 mL

Etanol 96 % (Untuk pencucian terakhir) = 3 x 25 mL x 15 kelompok

= 1125 mL

Sehingga banyak etanol yang dibutuhkan adalah sebanyak = 675 mL + 1350 mL + 1125 mL

= 3150 mL

= 3500 mL (dibuat lebih)

Jadi, larutan etanol 96 % yang dibutuhkan untuk sekelas adalah sebanyak 3500 mL atau 3,5 L.

b. Membuat Larutan H₂SO₄ 1,25 %

Larutan H₂SO₄ 1,25 % dibutuhkan sebanyak 50 mL.

Sedangkan dalam hal ini akan dibuat larutan H₂SO₄ untuk sekelas yang terdiri dari 15 kelompok. Dan digunakan untuk 3 kali pengerjaan.

Maka, larutan H₂SO₄ yang akan dibuat sebanyak :

Larutan H₂SO₄ (Untuk sample) = 3 50 mL 15 kelompok = 2250 mL

Larutan H₂SO₄ (Untuk pencucian) = 3 × 25 mL × 15 kelompok = 1125 mL

Maka, jumlah H₂SO₄ yang dibutuhkan secara keseluruhan = 2250 mL + 1125 mL

= 3375 mL

= 3500 mL (dibuat lebih)

Jadi, larutan H₂SO₄ yang dibuat untuk sekelas = 3500 mL

Larutan H₂SO₄ 1,25 % sebanyak 3500 mL dari H₂SO₄ pekat 25 N yang tersedia, dengan berat jenis 1,81 g/cm². Maka, volume H₂SO₄ pekat yang harus dipipet adalah :

BE H₂SO₄ = BE = Mr / 2 = g/molek

Konsentrasi H₂SO₄ encer = N = = = 0,4617 N

(V.N) Pekat = (V.N) Encer

V. 25 N = 3500 mL . 0,4617 N

V = 1615,95 mL.N / 25 N

V = 64,64 mL

Jadi, volume H₂SO₄ pekat yang harus dipipet = 64,64 mL.

c. Membuat Larutan NaOH 3,25 %

Larutan NaOH 3,25 % yang dibutuhkan sebanyak 50 mL. Sedangkan dalam hal ini akan dibuat larutan NaOH 3,25 % untuk sekelas yang terdiri dari 15 kelompok, dan digunakan untuk 3 kali pengerjaan.

Maka, larutan NaOH yang akan dibuat sebanyak :

Banyak Larutan NaOH yang akan dibuat = 3 50 mL 15 kelompok

= 2250 mL

Jadi, banyak larutan yang akan dibuat adalah 2500 mL.

Larutan NaOH 3,25 % ( b/v ) sebanyak 2500 mL, maka berat NaOH yang akan ditimbang sebanyak :

Berat NaOH yang akan ditimbang = 3,25 gram / 100 mL = Berat NaOH / 2500 mL

100mL. Berat NaOH = 3,25 g x 2500 mL

Berat NaOH = 8125 g.mL x 100 mL

Berat NaOH = 81,25 g

Jadi, berat NaOH yang akan ditimbang adalah 81,25 gram.

DAFTAR PUSTAKA

AACC. 2001. The Definition of Dietary Fiber. Cereal Fds. World.

Hermayanti, Yeni, Eli Gusti. 2006. Modul Analisis Proksimat. Padang : SMAK

Piliang, W.G. dan S. Djojosoebagio, Al Haj. 2002. Fisiologi Nutrisi. Vol. I. Edisi Ke-4. IPB Press, Bogor.

Sudarmadji, Slamet. et al. 1996. Prosedur Analisis Bahan Makanan dan Pertanian.Yogyakarta: Penerbit Liberty.

http://www.wikipedia- seratkasar/wiki.org

http://nusaindah.tripot.com